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Pres)、コザ、ジェイ.アール.(Koza, J.R.)著、”遺伝的プログラミング −自然的選択によるコンピユータのプログラミングについて(Genetic Programm ing-On the Programming of Computors by Natural Selection)”で説明されて いる。この表現は研究される過程の解析的説明を表し、発展型発見過程の最後の 結果である。この過程を用いて、情報理論と発展の組み合わせは、見かけは混乱 したシステム内の下にある秩序を閉じ込める数学的表現を発見することに帰着す る。情報コンテントのためにフイーチャーを調べ、次いで実験型モデリングか、 数学的発見か、又は該データに戻るか何れかに乗り込む、全体の過程はデータに ドライブされるパラダイムに基づく”発見の科学(Science of Discovery)”へ の体系的取り組みを説明する。 混乱したシステムの数学的説明の発展は基本的に内挿的性質(interpolative nature)か外挿的性質(extrapolative nature)へと該実験型モデルを変換する 。かくして数学的表現は、該実験型モデルの開発で使用されるトレーニング集合 の範囲の外側でデータ定義域内に於いてさえ出力値を予測するため使用出来る。 又数学的説明はモデル化されつつある過程又はシステム内への基本的見通しと恐 らくは下にある原理の発見とを得るための励まし(stimulus)を提供する。 本方法の全体的流れを図解するブロック図である。 適合型ビニングの例を示す。 適合型ビニングの例を示す。 データバランシングの方法を示す。 1次元のフイーチャー部分空間を示す。 2次元のフイーチャー部分空間を示す。 3次元のフイーチャー部分空間を示す。 どの入力がフイーチャー部分空間に含まれるかを表す例示的2進ビット記号列を示す。 ”情報豊富な”入力フイーチャーの発展を図解するブロック線図である。 ”情報豊富な”入力フイーチャーの発展を図解するブロック線図である。 2進記号列適応度の加重ルーレット選択ホイール(weighted roulette wheel)を示す。 交叉(crossover)操作線図を示す。 ローカルエントロピーパラメーターを計算する方法を図解するブロック線図である。 グローバルエントロピーパラメーターを計算する方法を図解するブロック線図である。 ローカル及びグローバル情報コンテントの計算を図解する。 ローカルエントロピーパラメーターとグローバルエントロピーパラメーターの例を示す。 最適モデルを決定する方法を図解するブロック線図である。 モデル発展の方法を図解するブロック線図である。 情報写像(information map)を発生させる方法を図解する。 遺伝子リストとそれの付随情報写像の例である。 エグゾースチブな次元のモデリング過程の方法を図解するブロック線図である。 出力状態確率ベクトル/出力状態値を計算する過程の方法を図解するブロック線図である。 モデル遺伝子用適応度関数を計算する方法を図解するブロック線図である。 1つのフレームワークを発展させるために分布状階層的モデリングの方法を図解するブロック線図である。 フレームワーク発展の方法を図解するブロック線図を含む。 フレームワーク発展の方法を図解するブロック線図を含む。 スーパーフレームワークを発展させるための分布状モデリングの方法を図解するブロック線図である。 スーパーフレームワーク発展用の考慮点のリストである。 クラスター発展の方法を図解するブロック線図である。 クラスター発展の方法を図解するブロック線図である。 データクラスターを発見する方法を図解するブロック線図である。 画像的表現用グローバルクラスタリング指数の計算方法を図解するブロック線図である。 均質ポリマー連鎖反応(POLYMER CHAIN REACTION ){ピーシーアール(PCR) }フラグメントの同定 本発明が均質ピーシーアールフラグメントの同定に適用された。本方法は最初 にデーエヌエイ溶解カーブ(DNA melting curve)の情報豊富な部分を同定し、 次いで該入力スペクトラムの情報豊富な部分集合を使用して最適モデルを発展さ せる。 背景 デーエヌエイフラグメント同定は伝統的にゲル電気泳動(gel electrophoresi s)により行われて来た。挿入染料(intercalated dyes)を使用する代替え方法 はあり得る時間と感度での利点を提案している。この方法は、加熱時2重螺旋デ ーエヌエイが変性する(捲きほごれる)と該染料蛍光量(dye fluorescence)が 減少することの観察に基づいている。温度に対する蛍光量をプロットする、最終 のいわゆる”溶解曲線(melt curve)”のデータ解析は該デーエヌエイフラグメ ントのユニークな同定のベースを提供する。しかしながら、該方法は、特定的デ ーエヌエイフラグメントの精確な同定を、他の非特定的フラグメントの存在及び 背景基盤(background matrix)からの蛍光ノイズの存在の両場合で、要求して いる。 スパイク(spiked)される食料サンプルの準備 この研究はピーシーアールを禁ずる知られる食料を評価した。該評価は、該禁 止食料の禁止効果を克服するために、該反応へのウシ血清アルブミン(bovine s erum alubumin){ビーエスエイ(BSA)}の添加能力をテストした。加えて、溶 解曲線解析を使用したピーシーアール製品の均質性検出が臭化エチジウム染色( ethidium bromide staining)を有する標準的ゲル電気泳動と比較された。 食料は地域の食料雑貨店で購入され、4℃で貯蔵された。30の異なる食料が ビーエイエム(BAM)手順で事前強化(per-enriched)された。処方された強化 法(enrichment)に従い、サンプルはサルモネラニューポート(Salmonella new port)でスパイクされるか又はスパイクされずに残されたが、表III参照。該 強化は次いでビーエイチアイ(BHI){デーアイエフシーオー(Difco)}内で1 :10に薄められ、次いで37℃で3時間培養された。 ポリビニルポリピロリドン(Polyvinylpolypyrrolidone){ピーブイピーピー( PVPP)}処理 グローバックサンプル(growback)の500マイクロリットル(500 ul)のア リコート(aliquot)がピーブイピーピー{クアリコン社(Qualicon, Inc.)} の50mgのタブレットを含むチューブに追加された。該チューブはボルテック ス(vortexed)されそして該ピーブイピーピーは15分間澄むようにされた。最 終浮遊物は次いで溶解過程で使用される。 サルモネラサンプルの準備 2mlのスクリューカップチューブ(screw cup tube)で、強化すなわちピー ブイピーピー処理サンプルの5マイクロリットルがデーエヌエイ挿入染料エスワ イビーアールグリーン(DNA intercalating dye SYBR R Green){モレキュラー プローブ(Molecular Probes)}の1:10、000希釈を含む溶解試薬{5m lビーエイエックス溶解バッフアー(5ml BAX R lysis buffer)と62.5ul (マイクロリットル)ビーエイエックスプロテアーゼ(62.5 ul BAX R Protease )}の200ul(マイクロリットル)に加えられた。該チューブは37℃で2 0分間次いで95℃で10分間培養された。95℃の培養の後、4mg/mlの ビーエスエイ(BSA)溶液の50ul(マイクロリットル)が該溶菌液(lysate )に追加された。これはピーブイピーピー処理済みと未処理のサンプルに行われ た。対照として、幾つかのサンプル未処理で残された。この未精製バクテリヤ溶 菌液の50マイクロリットルが、パーキンエルマー7700シークエンスデテク ター計器(Perkin Elmer 7700 Sequence Detector instrument)で使用されるピ ーシーアールチューブ内に含まれた1つのビーエイエックスサルモネラサンプル タブレット(BAX R Salmonella sample tablet)を水和するため使用された。該 チューブはキャップを付けられ、パーキンエルマー9600サーマルサイクラー (Perkin Elmer 9600 thermal cycler)内で次のプロトコルに依り熱サイクルに かけられた。 94℃ 2.0分 1サイクル 94℃ 15秒 35サイクル 72℃ 3.0分 72℃ 7分 1サイクル 4℃ ”長期間(forever)” 増幅後分析(Post Amplification Analysis) 増幅後、下記条件で運転することによりパーキンエルマー7700デーエヌエ イシークエンスデテクター(Perkin Elmer 7700 DNA Sequence Detector)上で 該溶解曲線が作られた。 プレートの種類: シングルリポーター(Single Reporter) 器械: 7700シークエンスデテクションシステム(7700 S equence Detection System) 運転: 実時間 染料層: エフエイエム(FAM) サンプルの種類: 未知である サンプル容積: 50ul(マイクロリットル) 運転条件: 70℃ 2分1サイクル データ収集せず 68℃ 10秒98サイクル データ収集する 自動インクレメント +0.3℃/サイクル 25℃ ”長期間” 該多成分データは該器械から移出され該分析に使用された。特定のデーエヌエ イフラグメントの製作は該アンプリフアイ(amplified)されたサンプルにビー エイエックスローデイングダイ(BAX R Loading Dye)の15マイクロリットルを 添加することにより検証された。次いで15マイクロリットルのアリコートが臭 化エチジウムを含む2%アガロースゲル(agarose gel)のウエル(well)内に 装填された。該ゲルは30分間180ボルトで運転された。特定の生成物は次い でユーブイトランスイルミネーション(UV transillumination)を使用して可視 化された。 データ分析 生の蛍光量(raw fluorescence)データが処理用にマイクロソフトエクセル( Microsoft Excel)に移入された。この段階からデータを可視化し該データから 予測をするため分岐的取り組みが使用された。 データ事前処理(Data Preprocessing) 蛍光ノイズを減らすために該データを事前処理することは成功するモデリング の尤度(likelihood)を増すことが実験的に決定された。該データ事前処理は次 の過程から成り、すなわち、 a.蛍光データ(fluorescence data)の正規化、 b.0.1℃の解像度でキュービックスプライン関数(cubic spline functio n)を用いた該正規化蛍光の内挿補間、 c.内挿補間された蛍光スペクトラムの対数を取る、 d.25点サビツスキーゴレイ平滑化関数(25 point Savitsky Golay smooth ing function)を用いた該蛍光の対数の平滑化、 である。 最終温度スペクトラムはここで説明されるモデリング方法への入力の集合とし て使用される。該温度スペクトラムを使用した2つの異なるモデリング例を説明 する。 過程a.データの正規化と可視化 該蛍光データは、最初にスペクトラム内の最低測定蛍光レベルを決定し、この 値を、直流オフセットを除くために、該スペクトラム内の各点から引くことによ り正規化される。上記の過程a.の正規化されたデータは次いでサビツスキーゴ レイの平滑化アルゴリズム(Savitzky-Golay smoothing algorithm)で平滑化され る。温度に対する平滑化蛍光の負の導関数{−dlog(F)/dT}が取られ 、−dlog(F)/dT(y軸)対温度(x軸)としてプロットされる。 過程b.該データからの予測 該正規化されたデータからスタートして、キュービックスプライン内挿関数( cubic spline interpolating function)を使用して0.1C分解能で該データ は内挿補間される。次いで該内挿されたデータの対数が取られ、次いで2.5度 (すなわち0.1℃で25の点)上でサビツスキーゴレイの平滑化アルゴリズム を用いて平滑化される。温度に対する該ログの蛍光の負の導関数が取られ{−d (logF)/dT}、サルモネラ用データ範囲:82.0℃−93.0℃(1 2データ点)を用いて1.0C間隔でパース(parsed)された。 方法比較用に、ここに説明された方法は2つの他の良く知られたモデリング方 法:ニューラルネットワーク及びロジスティック回帰(logistic regression) 、と比較され、結果は下表で報告される。 見出された最も有効なDNAフラグメント同定法は2つのモデリングスキーム をシーケンシャルな仕方で背中合わせで使うことを含んでいる。同定の第1レベ ルはスメア(smear)を非スメア(non-smear)から分離することである。これに 、非スメアサンプル用に関心のある特定のデーエヌエイフラグメントを同定する ことが続く。実際は、この階層的方法は、起こり得る出力カテゴリーを表す正、 負そしてスメアを有する1つの3状態モデルを使用するより精確であった。 1.特定ピーシーアールフラグメントに対する非特定ピーシーアールフラグメン トのモデリング 該ピーシーアールアンプリフイケーション過程(PCR amplification process )は、関心のあるデーエヌエイの特定の種類に対応するフラグメントのみならず 非特定ピーシーアールフラグメントも作る。第1例は本方法の該非特定と特定の ピーシーアールフラグメント間を区別する能力を展示する。149のロックされ たプロセス(すなわち、対照)特定的トレーニングスペクトルと、問題食料(ピ ーシーアール用で問題があると知られる実際の食料)の309のテストスペクト ルと、一緒に30の非特定的又は”スメア”の蛍光スペクトルのグループが創ら れた。0.1℃の温度分解能を有して、111点を含む各サンプル用の温度スペ クトル(11.1℃の範囲上の)が創られた。該ロックされたプロセスと問題食 料サンプルの両者が陽性と陰性の標本を含んだ。この例で、該陽性のサンプルは 特定のバクテリヤ(例えば、サルモネラ)でスパイクされ(すなわち汚染され) そして陰性のサンプルはスパイクされぬ(汚染されぬ)ようにされた。該スメア サンプルはロックされたプロセストレーニング集合(12スメアサンプル)と問 題食料テスト集合(18スメアサンプル)の両者にランダムに導入された。該陽 性及び陰性の両サンプル状態は合併され2進のゼロ”0”文字でラベル付けされ 、該スメアサンプル状態は2進の1”1”でラベル付けされた。 a.入力の最も情報豊富な集合を発展させること モデリング過程の第1歩は111次元の入力フイーチャー空間をより少ない、 より情報豊富な部分集合に減じることである。前に説明した発展型フレームワー クが該最も情報豊富なフイーチャーを発展させるために使用された。100の遺 伝子の初期遺伝子プールがランダムに発生され、そこでは各遺伝子は2進の11 1ビットの長さの記号列を有し、各ビットの状態は該対応入力フイーチャーが該 遺伝子内で賦活されたかどうかを表している。該発展過程はセル当たり1サンプ ルとなるべき平均セル占有数(mean cell occupation number)により抑えられ 、そして該発展は5世代より多く進んだ。各遺伝子の発展をドライブするために 、グローバルエントロピー、又は適応度関数としてローカルエントロピーの数加 重和(number-weighted-sum of local entropies)が使用された。該発展は固定 サイズ化された部分範囲(すなわち、適応型ビニングよりむしろ、固定されたビ 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